En los ecosistomas naturales acuáticos, la continuidad de las especies depende del equilibrio establecido entre los diferentes niveles de la trama trófica. Así, el desarrollo y supervivencia de larvas y juveniles depende de la presencia de organismos que conforman el fitoplancton y el zooplancton, quienes a su vez se producen en presencia de los nutrientes adecuados.
Es de gran importancia el conocer la composición química de los alimentos vivos, pues el utilizar un recurso pobre en nutrientes esenciales puede causar el desarrollo anormal y muerte masiva de las especies en cultivo. Existen estudios que así lo demuestran, como es el caso del desbalance nutricional que causa el uso de la levadura Saccharomyces sereviceae en la producción masiva de larvas de especies marinas (Hirata, 1980).
Se han hecho una gran cantidad de estudios para conocer la composición de las especies de alimento vivo más utilizados en Acuacultura en diferentes condiciones y con diferentes tipos de nutrientes (Tablas 3 y 4). Estos trabajos han revelado que el contenido nutricional de estas especies está en función directa de su alimento (Fogg, 1975; Watanabe et al., 1978a, 1983; Hirata et al., 1985). De acuerdo a lo anterior, es importante conocer y manejar las diferentes técnicas de cultivo del alimento vivo para establecer las condiciones más adecuadas, que permitan el obtener un alimento de alto contenido nutricional principalmente ricos en aminoácidos y ácidos grasos esenciales entre otros nutrientes, que favorezcan el desarrollo y supervivencia de las diferentes especies de crustáceos, moluscos y peces que se obtienen por Acuacultura (Tabla 5 y 6).
Existen diferentes técnicas que permiten obtener este enriquecimiento que van desde la manipulación de parámetros físicos (Tabla 2), como son la temperatura y el fotoperíodo; los parámetros químicos como la concentración y tipo de macronutrientes, y hasta la adición de fuentes orgánicas (amincácidos, vitaminas, etc.) en bajas concentraciones.
PROTEINA | CARBOHIDRATO | GRASA | |
Tetraselmis | 1.42 | 0.41 | 0.70 |
Dunaliella | 1.43 | 0.80 | 0.15 |
Monochrysis | 0.94 | 0.59 | 0.22 |
Chaetoceros | 1.12 | 0.22 | 0.21 |
Skeletonema | 1.38 | 0.79 | 0.17 |
Phaeodactylum | 0.88 | 0.64 | 0.17 |
La composición celular reportada, corresponde a resultados de cultivo en condiciones físicoquímicas y nutricionales similares para las seis espcies (las cantidades de proteína, carbohidratos y grasas están expresadas en relación a cantidad total de Carbono).
ESPECIES | Brachionus plicatilis | Tigriopus japonicus | Acatia sp | Daphnia sp | Moina sp | ||
MEDIO DE CULIVO | LEVADURA | LEVADURA + Chlorella | Chlorella | LEVADURA + Chlorella | - | - | LEVADURA |
Humedad | 89.6 | 89.1 | 87.6 | 87.3 | 88.1 | 89.3 | 87.2 |
Proteínas | 7.2 | 7.9 | 7.8 | 9.0 | 8.5 | 7.5 | 8.8 |
Lípidos | 2.3 | 2.3 | 3.8 | 2.8 | 1.3 | 1.4 | 2.9 |
Ceniza | 0.4 | 0.4 | 0.5 | 0.5 | 2.1 | 0.7 | - |
Ca mg/g | 0.12 | 0.26 | 0.21 | 0.15 | 0.39 | 0.21 | 0.12 |
Mg mg/g | 0.14 | 0.17 | 0.14 | 0.23 | 0.76 | 0.12 | 0.12 |
P mg/g | 1.48 | 1.44 | 1.37 | 1.31 | 1.48 | 1.46 | 1.85 |
Na mg/g | 0.41 | 0.30 | 0.29 | 0.61 | 6.63 | 0.74 | 1.09 |
K mg/g | 0.35 | 0.12 | 0.23 | 0.84 | 2.21 | 0.72 | 0.92 |
Fe g/g | 15.9 | 52.5 | 43.3 | 33.8 | 11.5 | 72.2 | 46.4 |
Zn g/g | 7.4 | 9.8 | 8.2 | 12.3 | 39.0 | 12.8 | 10.0 |
Mn g/m | 0.4 | 1.1 | 1.1 | 1.0 | 0.2 | 13.2 | 0.5 |
Cu g/g | 1.1 | 1.5 | 1.7 | 2.4 | 2.8 | 1.1 | 5.8 |
Artenia sp nauplios | Brachionus plicatilis | Acartia clausi | Tigriopus japonicus | Moina spp | |||||||||||
Isoleucina | 2.6 | 7.4 | 99 | 3.4 | 8.8 | 117 | 3.5 | 8.8 | 117 | 2.5 | 6.7 | 89 | 2.5 | 6.6 | 88 |
Leucina | 6.1 | 17.3 | 128 | 6.1 | 15.8 | 117 | 5.5 | 13.8 | 102 | 5.0 | 13.3 | 99 | 6.0 | 15.9 | 118 |
Metionina | 0.9 | 2.6 | 48* | 0.8 | 2.1 | 39* | 1.5 | 3.8 | 70 | 1.1 | 2.9 | 54* | 1.0 | 2.7 | 50* |
Cistina | 0.4 | 1.1 | 41* | 0.6 | 1.6 | 59* | 0.8 | 2.0 | 74 | 0.7 | 1.9 | 70 | 0.6 | 1.6 | 59* |
Fenilalanina | 3.2 | 9.1 | 96 | 3.9 | 10.1 | 106 | 3.7 | 9.3 | 98 | 3.5 | 9.3 | 98 | 3.6 | 9.5 | 100 |
Tirosina | 3.7 | 10.5 | 162 | 3.1 | 8.0 | 123 | 3.6 | 9.0 | 138 | 4.0 | 10.7 | 165 | 3.3 | 8.8 | 135 |
Treonina | 1.7 | 4.8 | 45* | 3.2 | 8.3 | 78 | 4.2 | 10.5 | 99 | 3.8 | 10.1 | 95 | 3.8 | 10.1 | 95 |
Triptofano | 1.0 | 2.8 | 165 | 1.2 | 3.1 | 182 | 1.1 | 2.8 | 165 | 1.1 | 2.9 | 171 | 1.2 | 3.2 | 188 |
Valina | 3.2 | 9.1 | 96 | 4.2 | 10.9 | 115 | 4.5 | 11.3 | 119 | 3.3 | 8.8 | 93 | 3.2 | 8.5 | 89 |
Lisina | 6.1 | 17.3 | 103 | 6.1 | 15.8 | 94 | 5.4 | 13.5 | 80 | 5.7 | 15.2 | 90 | 5.8 | 15.4 | 92 |
Arginina | 5.0 | 14.2 | 122 | 4.6 | 11.9 | 103 | 4.3 | 10.8 | 93 | 5.2 | 13.9 | 120 | 5.1 | 13.5 | 116 |
Histidina | 1.3 | 3.7 | 77 | 1.5 | 3.9 | 81 | 1.9 | 4.8 | 100 | 1.6 | 4.3 | 90 | 1.6 | 4.2 | 88 |
* | ** | *** |
* g/100 g proteína cruda (Watanabe et al., 1978a)
** Expresado como total de aminoácidos esenciales (a.a.e.)
*** Registros basados en la composción con a.a.e. requeridos para peces -el 100 indica los mismos requerimientos
ESPECIE CULTIVADA | MICROALGA | CONCENTRACION | PRODUCCION | SUPERVIVENCIA % | REFERENCIA |
BIVALVOS | |||||
Ostrea edulis | Chaetoceros calcitrans | 3,000 cel/día/larva (estadio temprano) | 14,000 org/200 l | Sato & Takeda. 1970 | |
Monochrysis lutheri | 10,000 cel/día/larva | ||||
Andara broughtonii | Chaetoceros calcitrans | 40,000 cel/ml | 10,000 org/35 l | 59.3% | Ito et al., 1968 |
Monas sp | 10,000 cel/ml | - | |||
Meretrix lamarckii | Chaetoceros calcitrans | 30,000 cel/ml | - | 20% | Tanaka, 1968 |
Nitzschia closterium | 50,000 cel/ml | - | |||
Spisula sachalinensis | Chaetoceros calcitrans | 30,000 a 150,000 cel/ml | 100,000 org | 61% | Akimoto et al., 1964 |
Patinopecten yezoensis | Chaetoceros calcitrans | 20,000 cel/ml | - | 88% | Takeda, 1965 |
Skeletonema costatum | 20,000 cel/ml | ||||
Ostrea edulis | Chaetoceros calcitrans | 2,000 cel/ml | 12,000 org/ton | 4% | Imai, 1967 |
Monochrysis lutheri | 15,000 cel/ml | ||||
CRUSTACEOS | |||||
Penaeus japonicus | Skeletonema costatum | 10,000 cel/ml | - | 56% | Hudinaga, 1962 |
Penaeopsis monoceros | Skeletonema costatum | - | - | 25% | Funada, 1966 |
Chaetoceros calcitrans | (nauplio-postlarva) |