背部茶褐色，侧部浅褐色，腹部白色；同眼宽的黑侧带从嘴延伸到尾鳍基，侧带上下有浅带；浅带下是更窄的暗色带。幼鱼黑侧带明显，但成鱼不明显。体延长，半圆柱形；头宽扁。嘴大，端位，下颌突出；颌、上腭和舌上具绒毛状齿。第一背鳍具7-9根（通常8根）单独的短、硬棘，嵌入凹槽，无膜相连；具28-33根软条。第二背鳍长，成鱼前部背鳍条稍高。胸鳍尖，年龄大的鱼变为钩状。臀鳍短于背鳍；具1-3根棘，23-27根软条。成鱼尾鳍新月状，上圆长于下圆突出（幼鱼尾鳍圆，中部鳍条延长）。鳞小，嵌入厚皮；侧线前部稍呈波浪状。

15-20千克的军曹鱼亲体	水槽中的军曹鱼幼鱼
1300升幼鱼培育箱沉入30000升循环水道	覆盖20个军曹鱼亲鱼循环箱的结构

图片来自德克萨斯大学海洋科学所渔业和海水养殖实验室-美国德克萨斯阿兰瑟斯港。

1975年，利用在北卡罗莱纳野生捕捞的军曹鱼的卵，首次对军曹鱼的养殖进行了研究。描述了幼鱼的发育、在试验养殖结束后131天，研究认为军曹鱼生长快，肉质好，具有良好水产养殖潜力。上世纪80年代后期和90年代早期在美国和中国台湾省对军曹鱼进行了另外的研究，中国台湾省在90年代早期首次报告了该种类在养殖环境中产卵。通过继续研究，到1997年，开发了养殖军曹鱼鱼苗的技术，中国台湾省自己生产鱼种，再养殖为成鱼，大多在近岸网箱进行。

在美国，首次报告在养殖环境军曹鱼的产卵发生于1996年，在南密西西比大学的海湾沿海研究实验室，位于密西西比欧申斯普林斯。在2000和2006之间，维吉利亚、德克萨斯、南卡罗莱纳和佛罗里达的水产养殖设施也报告了通过捕捞怀卵雌鱼注射或灌输激素或利用光周期/水温操控刺激使军曹鱼产卵的情况。

到2006年，美国的两个设施，德克萨斯阿兰瑟斯港德克萨斯大学海洋科学所渔业和海水养殖实验室以及佛罗里达凯斯水产养殖中心（位于佛罗里达马拉松）报告了自2002年以来军曹鱼卵的产量。军曹鱼成鱼网箱养殖正在巴哈马、伯里兹、多米尼加共和国、墨西哥和波多黎各进行，美国大陆、加勒比和中美洲也开展了其他项目；但2006年没有大型商业军曹鱼产量的报告，该产业在西半球可被归类为“发展中”。

军曹鱼在世界范围内分布在温暖海洋水域，除中东部太平洋外，有大量潜在区域适宜该当地物种的栖息。见于各水层，在沿海和大陆架水域捕捞，尽管其一般被认为是外海种类。捕捞野生军曹鱼不是主要的商业渔业，在其分布区域不普遍，一般被认为是偶然捕捞。常伴随一些结构或生物出现，例如油气平台、海藻丛、浮标、海龟、光线和任何类型的漂浮物。

军曹鱼喜温水（>20ºC），有年度洄游模式，可预测。在春季到达墨西哥湾西北，可在早秋捕捞，从4月到9月多次产卵，7月为高峰。雄鱼1-2龄、雌鱼2-3龄性成熟，雌鱼生长快，个体大，最大可到60千克。产卵在近岸和离岸水域进行，雌鱼排出几十万到几百万粒的卵（直径1.4毫米），然后由伴随的雄鱼授精。开始发育的受精卵为深色，有浮性，约24小时孵出。军曹鱼幼鱼生长快，与多数在孵出时3.5毫米TL的海洋种类相比要大。幼鱼见于近岸和离岸水域，常位于马尾藻丛或海藻丛隐蔽、摄食。军曹鱼为随机摄食者，胃含物中包括不同的鱼、虾、鱿鱼，特别是蟹。

军曹鱼容易受到一般影响其他温水海洋物种的许多病毒、细菌和寄生虫的感染。已确定病害的管理是到目前为止军曹鱼养殖的主要挑战之一，特别是在台湾。下表是报告的有关军曹鱼的一些病原体。目的是只作为信息，养殖者应当参考发表的病害参考来源进行实际治疗和诊断。此外，生产者需要检查有关批准用于食用鱼的化学品和药品的当地和联邦具体规定。

在某些情况下，抗生素和其它药物被用于治疗，但将它们列入本表并不意味着是粮农组织的建议。

疾病	致病因子	类型	综合病症	措施
海绒病；腰鞭毛虫病	眼点淀粉卵鞭虫	寄生性腰鞭毛虫	咳嗽；发光；鳃盖突开；不愿摄食；见于鳃和鳍上；在立视镜下可见鳃丝上小黑点	硫酸铜五水化合物；一些情况下降低盐度（淡水浸泡）；冲洗系统；福尔马林淋洗/治疗；机械过滤降到至少40微米
隐核虫病；海洋白点	刺激隐核虫	体外原生动物	皮肤上可见白点；有大型白点群落	延长硫酸铜浸泡；淡水浸泡；福尔马林治疗；盐度减少到15‰或在2周内将系统温度减少到<19ºC
纤毛虫固着感染	累枝虫	高茎纤毛虫	培育期发生；皮肤/鳍、鳃弓或嘴里有大量白色或发红群落；污染水域多发；常与被称为红痛病的革兰氏阴性细菌条件有关	福尔马林治疗；淡水淋洗/浸泡；严重细菌感染用抗生素
车轮虫病	车轮虫	原生动物寄生	培育期发生；见于皮肤和鳃上；无食欲；无生气；慢性低死亡率；常导致二次感染	福尔马林治疗；淡水淋洗；硫酸铜治疗；吡喹酮淋洗或延长浸泡
单殖吸虫感染	新贝尼登虫	单殖吸虫扁形虫寄生	成鱼期发生；皮肤损坏、溃疡；烂鳍；眼损坏，可导致失明	福尔马林治疗；淡水淋洗；硫酸铜治疗；吡喹酮淋洗或延长浸泡
粘孢虫病	球孢虫状粘孢虫	粘孢虫寄生	无食欲、腹水；扩大的肾有斑点或结节；皮肤溃疡；消化道有孢子	不了解；消毒系统；检疫感染的鱼
球虫病	球虫	原生动物寄生	腹肿胀；突眼；肝组织囊肿；组织感染情况不同	口服莫能霉素治疗；减少压力
淋巴囊肿	虹彩病毒	病毒	培育期发生；皮肤、鳍和鳃上有白色，不平的增长物	不了解；消毒系统；检疫感染的鱼
巴斯德菌病	美人鱼发光杆菌亚种食鱼巴斯德菌	细菌	发白；肉芽肿形肾、肝和脾	不了解，但正在开发疫苗
弧菌	鳗弧菌、创伤弧菌和副溶血弧菌	细菌	腹肿胀；皮肤溃疡；眼突出；无生气；皮肤发黑；腹腔腹水	使用抗生素；清除病鱼；消毒系统；减少压力
二次细菌感染（新贝尼登虫感染后）	链球菌	细菌	可致军曹鱼失明；眼突出；皮肤溃疡；发暗	使用抗生素；清除病鱼；消毒系统；减少压力

供病理学专业知识的单位

以下是几个可以提供专业技术知识的单位:

• 水产兽医和疾病诊断实验室
• 德克萨斯兽医诊断实验室

中国和中国台湾省均认为军曹鱼生长快、肉质好，是未来潜在的最重要的海水养殖鱼类之一。由于捕捞野生军曹鱼不是主要渔业，养殖军曹鱼还处于初期，明显缺乏该种类的市场和贸易详情。由于目前数量有限，许多海产品消费者可能从未品尝过军曹鱼；增加来自水产养殖的供应，加上有效营销，对未来扩大这种白色肉质、质硬的鱼的市场是至关重要的。

中国台湾省报告，该种类比其他鱼价格相对要高，大的军曹鱼（8-10千克）为整鱼销售，在日本主要销售小一些的鱼（6-8千克），整条或无头销售（一些用于生鱼片），鱼片出口到其他市场。军曹鱼价格根据规格变化；2004年，在中国台湾省17磅（7.7千克）以上的整鱼市场价格为5.50美元/千克，小鱼的价格低。

亚洲以及其他地区进行的军曹鱼养殖的当前状况显示，该种类的养殖有光明的前景。军曹鱼有几个理想的特点，最重要的是生长快、肉质好，未来全球产量可能扩大。中国、中国台湾省和美国的研究人员和商业生产者已经建立了军曹鱼亲鱼的产卵池和水箱，已经具有了生产鱼苗和鱼种的技术。

军曹鱼培育阶段的改进是关键，如果养殖者有能力提供大量的幼鱼，则要求投放大型的商业网箱生产。为此，美国和台湾的研究者正开发幼鱼生产的循环精养和超精养系统，采用温度控制、UV杀菌、滚筒过滤、蛋白分离器和增氧系统。到目前为止，台湾的一个高密度幼鱼生产系统十分成功，在4周培育军曹鱼从7克到76克，使产量和成活率最佳化。最初的放养密度为370尾/立方米，最后捕捞为28千克/立方米。

军曹鱼的广盐性是进行养殖的另一个兴趣点，需要进一步研究。尽管一般从接近海洋盐度的水域（30-35‰）获得，军曹鱼幼鱼已成功地在盐度低于5‰的水域试养了8周，具有良好的FCR和生长率。军曹鱼在不同盐度的生长能力可以为养殖者带来另外的生产机会。

作为目前世界上最大的军曹鱼养殖者，中国未来的产量是该物种商业化的一个主要因素。因此，作为饲料的杂鱼的可获得性是扩大中国军曹鱼产业的主要限制因素之一。尽管这类饲料缺乏，但由于网箱系统广泛分布在南方沿海省（广东和海南），生产者确定军曹鱼是有巨大潜力的种类。未来军曹鱼全球供应、销售和价格将肯定影响中国和中国台湾省，以及东南亚其他国家的军曹鱼未来生产或失去生产。

取决于池塘管理、养殖密度、投喂率和水交换率，池塘养殖的军曹鱼可产生水质问题和污水营养过载。军曹鱼不同生活阶段的大规模生产可潜在影响生产区所处的沿海区域，要求对生产排放进行监测。已经在近岸和离岸网箱养殖军曹鱼，无论其位于何处，均产生一定类型的环境影响。生产活动内在的一些风险包括，但不局限于，逃逸（遗传污染）、病害传播、养殖点内及周围营养物承载。

自1998年起，开始了显著的军曹鱼养殖生产，注意到在中国台湾省军曹鱼生产取得成功和扩大的同时，病害对养殖鱼的影响是主要问题，必须尽可能实施最佳管理操作。由于每年受台风威胁，那里的一些养殖者将其养殖系统设在更封闭、能量更低的区域，减少了高水流和冲洗率。近岸的强化养殖生产导致病害爆发情况的增加，在一些情况下，在污染程度更重的区域网箱养殖的军曹鱼肉质差。

军曹鱼网箱养殖扩大到诸如加勒比和中美洲，网箱靠近敏感的珊瑚礁区域，也要求生产者监测有关的影响和临近的生态系统的营养承载。网箱养殖环境影响因地点不同而不同，许多区域的水交换率和稀释因素足以防止营养过载。但需要考虑每个点具有一定的承载能力。

另一个环境考虑是，由于军曹鱼是更高营养层的肉食动物，需要利用含很高粗蛋白的饲料（目前正在调查具体的营养要求），其中一部分来自鱼粉。为使水产养殖持续供应世界范围的对海产品日益增长的需求，对用于鱼饲料（例如军曹鱼）的辅助或替代蛋白来源进行另外的研究已刻不容缓。为此，已经和正在进行该种类在蛋白、脂质和鱼粉替代方面具体营养要求的研究。

随着军曹鱼养殖在未来的扩大，最低环境影响的高质量产品的有效生产应当是理想的目标。

养殖军曹鱼的所有阶段应当遵循粮农组织《负责任渔业行为守则》的原则，应当在整个养殖过程中执行最佳管理操作，并包括详细的亲鱼和生产的监测，使用高质量和全价饲料，定期抽样，观察疾病和/或寄生虫情况并及时清除病鱼。

Arnold, C.R., Kaiser, J.B. & Holt, G.J. 2002. Spawning of cobia Rachycentron canadum in captivity. Journal of the World Aquaculture Society, 33:205-208.

Benetti, D.D., Alarcon, J.F., Stevens, O.M., O'Hanlon, B., Rivera, J.A., Banner-Stevens, G. and Rotman, F.J. 2003. Advances in hatchery and growout technology of marine finfish candidate species for offshore aquaculture in the Caribbean. Proceedings of the Gulf and Caribbean Fisheries Institute, 54:475-487.

Briggs, J.C. 1974. Cobia, Rachycentron canadum. In: A.J. McClane (ed.), McClane's new standard fishing encyclopedia and international angling guide, p. 219. Holt, Rinehart & Winston, New York, USA.

Chen, S.C., Kou, R.J., Wu, C.T., Wang, P.C. & Su, F.Z. 2001. Mass mortality associated with a Sphaerospora-like myxosporidean infestation in juvenile cobia, Rachycentron canadum (L.), marine cage cultured in Taiwan. Journal of Fish Diseases, 24:189-195.

Chou, R.L., Her, B.Y., Su, M.S., Hwang, G., Wu, Y.H. & Chen, H.Y. 2004. Substituting fish meal with soybean meal in diets of juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquaculture, 229:325-333.

Chou, R.L., Su, M.S. & Chen, H.Y. 2001. Optimal dietary protein and lipid levels for juvenile cobia (Rachycentron canadum). Aquaculture, 193:81-89.

Collette, B.B. 1978. Rachycentridae. In: W. Fischer (ed.), FAO species identification sheets for fishery purposes, western and central Atlantic (Fishing area 31), Vol. 4. (unpaginated). FAO, Rome, Italy.

Craig, S.R., Schwarz, M.H. & McLean, E. 2006. Juvenile cobia (Rachycentron canadum) can utilize a wide range of protein and lipid levels without impacts on production characteristics. Aquaculture, 261:384-391.

Denson, M.R., Stuart, K.R., Smith, T.I.J., Weirich, C.R. & Segars, A. 2003. Effects of salinity on growth, survival, and selected hematological parameters of juvenile cobia Rachycentron canadum. Journal of the World Aquaculture Society, 34:496-504.

Ditty, J.G. & Shaw, R.F. 1992. Larval development, distribution, and ecology of cobia Rachycentron canadum (Family: Rachycentridae) in the northern Gulf of Mexico. Fishery Bulletin, 90:668-677.

Faulk, C.K. & Holt, G.J. 2003. Lipid nutrition and feeding of cobia Rachycentron canadum larvae. Journal of the World Aquaculture Society, 34:368-378.

Faulk, C.K. & Holt, G.J. 2005. Advances in rearing cobia Rachycentron canadum larvae in recirculating aquaculture systems: live prey enrichment and greenwater culture. Aquaculture, 249: 231-243.

Faulk, C.K. & Holt, G.J. 2006. Responses of cobia Rachycentron canadum larvae to abrupt or gradual changes in salinity. Aquaculture, 254:275-283.

Faulk, C.K., Benninghoff, A.D. & Holt, G.J. 2007. Ontogeny of the gastrointestinal tract and selected digestive enzymes in cobia Rachycentron canadum. Journal of Fish Biology, 70:1-17.

Fowler, H.W. 1936. The marine fishes of West Africa. Bulletin of the American Museum of Natural History, 70(2). 1493 pp.

Franks, J.S., Ogle, J.T., Lotz J.M., Nicholson, L.C., Barnes, D.N. & Larson, K.M. 2001. Spontaneous spawning of cobia, Rachycentron canadum, induced by human chorionic gonadotropin (HCG), with comments on fertilization, hatching, and larval development. Proceedings of the Gulf and Caribbean Fisheries Institute, 52:598-609.

Franks, J.S., Warren, J.R. & Buchanan, M.V. 1999. Age and growth of cobia, Rachycentron canadum, from the northeastern Gulf of Mexico. Fishery Bulletin 97:459-471.

Goode, G.B. 1884. The fisheries and fishery industries of the United States. Section 1: Natural history of useful aquatic animals. Text. U.S. Commission on Fisheries, Washington D.C., 895 pp.

Hardy, J.D, Jr. 1978. Development of fishes of the Mid-Atlantic Bight: an atlas of egg, larval, and juvenile stages. Vol. III. Aphredoderidae through Rachycentridae. U.S. Fish and Wildlife Service, Biological Services Program, Washington, D.C. FWS/OBS-78/12, 394 pp.

Hassler, W.W. & Rainville, R.P. 1975. Techniques for hatching and rearing cobia, Rachycentron canadum, through larval and juvenile stages. University of North Carolina Sea Grant College Program, UNC-SG-75-30, Raleigh, North Carolina, USA. 26 pp.

Hitzfelder, G.M., Holt, G.J., Fox, J.M. & McKee, D.A. 2006. The effect of rearing density on growth and survival of cobia, Rachycentron canadum, larvae in a closed recirculating aquaculture system. Journal of the World Aquaculture Society, 37:204-209.

Huang, T.S., Lin, K.J., Chen, C.C. & Tsai, W.S. 2002. Study on cobia, Rachycentron canadum, over-wintering using the indoor high-density recirculating system. Journal of Taiwan Fisheries Research,10:53-62 (in Chinese with English abstract).

Joseph, E.B., Norcross, J.J. & Massmann, W.H. 1964. Spawning of the cobia, Rachycentron canadum, in the Chesapeake Bay area, with observations of juvenile specimens. Chesapeake Scientist, 5(1-2):67-71.

Kaiser, J.B. & Holt, G.J. 2005a. Cobia aquaculture. In: A.M. Kelly & J.T. Silverstein (eds.), pp. 465-469, Aquaculture in the 21st Century. American Fisheries Society. Bethesda, Maryland, USA.

Kaiser, J.B. & Holt, G.J. 2005b. Species Profile: Cobia. SRAC Publication number 7202. Southern Regional Aquaculture Center, Mississippi, USA. 6 pp.

Kaiser, J.B. & Holt, G.J. 2004. Cobia: a new species for aquaculture in the US. World Aquaculture, 35:12-14.

Kilduff, P., DuPaul, W., Osterling, M., Olney, J, Jr. & Tellock, J. 2002. Induced tank spawning of cobia, Rachycentron canadum, and early larval husbandry. World Aquaculture, 33(2): 35-38.

Liao, I.C. 2003. Candidate species for open ocean aquaculture: the successful case of cobia Rachycentron canadum in Taiwan. In: C.J. Bridger & B.A. Costa-Pierce (eds.), pp. 205-213, Open Ocean Aquaculture: From Research to Commercial Reality. World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA.

Liao, I.C., Huang, T.S., Tsai, W.S., Hsueh, C.M., Chang, S.L. & Leano, E.M. 2004. Cobia culture in Taiwan: current status and problems. Aquaculture, 237:155-165.

Liao, I-C. & Leaño, E.M. (eds.) 2007. Cobia Aquaculture: Research, Developments and Commercial Production. Asian Fisheries Society, Manila, Philippines, Fisheries Society of Taiwan, Keelung, Taiwan and World Aquaculture Society, Baton Rouge, USA. 178 pp.

Liu, P. C., Lin, J.Y., Hsiao, P.T. & Lee, K.K. 2004. Isolation and characterization of pathogenic Vibrio alginolyticus from diseased cobia Rachycentron canadum. Journal of Basic Microbiology, 44: 23-28.

Liu, P.C., Lin, J.Y. & Lee. K.K. 2003. Virulence of Photobacterium damselae subsp. piscicida in cultured cobia Rachycentron canadum. Journal of Basic Microbiology, 43:499-507.

Lopez, C., Rajan, P.R., Lin, J.H.Y., Kuo, T.Y. & Huey-Lang Yang. 2002. Disease outbreak in seafarmed cobia (Rachycentron canadum) associated with Vibrio spp., Photobacterium damselae ssp. piscicida, monogenean and myxosporean parasites. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists, 22:206-211.

Resley, M.J., Webb, K.A. & Holt, G.J. Growth and survival of juvenile cobia Rachycentron canadum cultured at different salinities in recirculating aquaculture systems. Aquaculture, 253:398-407.

Shaffer, R.V. & Nakamura, E.L. 1989. Synopsis of biological data on the cobia Rachycentron canadum (Pisces: Rachycentridae). FAO Fisheries Synopsis 153 (National Marine Fisheries Service/S 153), U.S. Department of Commerce, NOAA Technical Report, National Marine Fisheries Service, 82. Washington, D.C., USA.

Su, M.S. & Liao, I.C. 2001. Present status and prospects of marine cage aquaculture in Taiwan. In: I.C. Liao, & J. Baker (eds.), pp. 193-201, Aquaculture and Fisheries Resource Management. TFRI Conference Proceedings, Vol. 4. Taiwan Fisheries Research Institute, Keelung, Taiwan.

Su, M.S., Chien, Y.H. & Liao, I.C. 2000. Potential of marine cage aquaculture in Taiwan: cobia culture. In: I.C. Liao & C.K. Lin (eds.), pp. 97-106, Cage Aquaculture in Asia. Asian Fisheries Society, Manila, Philippines & World Aquaculture Society - Southeast Asian Chapter, Bangkok, Thailand.

Sun, L., Chen, H., Huang, L, Wang, Z. & Yan, Y. 2006. Growth and energy budget of juvenile cobia (Rachycentron canadum) relative to ration. Aquaculture, 257:214-220.

Wang, J.T., Liu, Y.J., Tian, L.X., Mai, K.S., Du, Z.Y., Wang, Y. & Yang, H.J. 2005. Effect of dietary lipid level on growth performance, lipid deposition, hepatic lipogenesis in juvenile cobia (Rachycentron canadum). Aquaculture, 249:439-447.

Webb, K.A., Hitzfelder, G.M., Faulk, C.K. & Holt, G.J. 2007. Growth of juvenile cobia, Rachycentron canadum, at three different densities in a recirculating aquaculture system. Aquaculture, 264:223-227.

Zhou, Q.C., Tan, B.P., Mai, K.S. & Liu, Y.J. 2004. Apparent digestibility of selected feed ingredients for juvenile cobia Rachycentron canadum. Aquaculture, 241:441-451.

Zhou, Q.C., Wu, Z.H., Tan, B.P., Chi, S.Y. & Yang, Q.H. 2006. Optimal dietary methionine requirement for juvenile cobia (Rachycentron canadum). Aquaculture 258:551-557.