Suministro de semilla
Psetta maxima es una especie gonocórica con sexos separados. Los reproductores son mantenidos en tanques cuadrados de concreto o cemento, con volúmenes entre 20-40 m³ a densidades de 3-6 kg/m³ y alimentados con pellets húmedos. Los desoves se obtienen extrayendo los gametos (esperma y huevos) de los reproductores. Las hembras experimentan ciclos ovulatorios con un período aproximado de 70-90 horas. Los huevos son pelágicos y de forma esférica. El diámetro de los huevos varía entre 0,9 mm y 1,2 mm. El dsarrollo embrionario toma 60-70 días. Después de eclosionar, las larvas de rodaballo miden 2,7-3,1 mm de longitud..
Producción en viveros
El cultivo de larvas puede ser semi-intensivo o intensivo. En los sistemas semi-intensivos, las larvas son cultivadas a baja densidad (2-5 larvas/litro) en un gran volumen (50 m³), mientras que en el cultivo intensivo la densidad de larvas es más alta (15-20/litro) y el volumen del tanque es 20-30 m³. En ambos sistemas la temperatura de crianza es 18-20 °C. Las larvas recién eclosionadas se alimentan de sus propias reservas vitelinas; la apertura de la boca ocurre al día 3. Entonces la alimentación se basa en rotíferos y artemia. Se agrega fitoplancton al medio de cultivo. La primera alimentación se proporciona en tanques cuadrados con esquinas redondeadas y bombeo de agua de mar en circuito abierto. Se emplean varios alimentos comerciales en la etapa de primera alimentación.
Criadero
La crianza de los rodaballos se realiza en tanques cuadrados o circulares (10-30 m³) con bombeo de agua de mar en circuito abierto. Usualmente se usan sistemas de aireación para mantener el agua saturada de oxígeno. Los juveniles son alimentados con dietas secas peletizadas, introducidas manualmente o automáticamente. El peso varía entre 5-10 g y 80-100 g durante el período de pre-engorda (4-6 meses de duración).
Producción en viveros
Los rodaballos son engordados ya sea en tanques en tierra (la técnica más común para esta especie) o en jaulas de fondo plano.
Tanques en tierra
Se usan tanques de cemento cuadrados o circulares (25-100 m³), con bombeo de agua de mar en circuito abierto. Normalmente se usan sistemas de aireación u oxigenación para mantener el agua saturada de oxígeno. La alimentación consiste de pellets extruídos, que se introducen manualmente o automáticamente. Los elementos que determinan la productividad son la temperatura y la calidad de los alevines. Las temperaturas óptimas para la alimentación varían entre 14-18 °C, mientras que la gama extrema para el cultivo del rodaballo es 11-23 °C. Los factores limitantes son patologías, tecnologías de cultivo y mercados.
Jaulas
Se usan jaulas sumergidas a varios niveles, o jaulas flotantes, en ambos casos de fondo plano. Los marcos son metálicos, con un fondo de metal o red. Los alimentos extruídos peletizados se entregan manualmente. Los elementos que determinan la productividad son localización apropiada, temperatura del agua y calidad de los alevines.
Suministro de alimento
Dietas comerciales para rodaballo están disponibles, con un costo actual (2003) de 900 EUR/tonelada. La tasa de conversión del alimento (TCA) típica es 1,1-1,2:1.
Técnicas de cosecha
Los peces son cosechados manualmente y sacrificados colocándolos en contenedores llenos con hielo y agua de mar, transportándolos luego a unidades de procesamiento.
Manipulación y procesamiento
Los peces cosechados son embalados en cajas de poliestireno, cubiertos con una capa de hielo y película plástica. En España, los rodaballos generalmente son comercializados enteros y en fresco, mientras que en el resto de Europa generalmente son eviscerados antes de la venta. España ha comenzado a producir rodaballo fileteado para satisfacer otra demanda del mercado europeo. La demanda por tamaño ha cambiado. Antes abarcaba entre 1,5-2,0 kg pero ahora tamaños más pequeños son aceptables; actualmente las ventas varían entre 0,7 kg y 2,0 kg.
Costos de producción
El costo de producción de engorda es alrededor de 5-6 EUR/kg en tanques y 5 EUR/kg en jaulas. A pesar de los costos más altos del cultivo en tanques en tierra, este sigue siendo la norma debido a que el cultivo en jaula de esta especie está aun en etapa experimental y hay pocas localizaciones que reúnen las condiciones óptimas para la engorda.
En algunos casos se han utilizado antibióticos y otros productos farmacéuticos en el tratamiento, pero su inclusión en esta tabla no implica una recomendación de la FAO.
Enfermedad Amébica de las Agallas (AGD) |
Neoparamoeba pemaquidensis |
Ectoparásito |
Parasitismo de las agallas; dificultad y daño respiratorio |
Baño de agua dulce |
Tricodiniasis |
Trichodina spp. |
Ectoparásito |
Destello; obscurecimiento de la piel; letargo; dificultades respiratorias; frotamiento de la cubierta de las agallas y del cuerpo contra las superficies de los estanques o jaulas |
Baño desinfectante |
Escuticociliatosis |
Philasteridis dicentrarchi |
Ecto, Endoparásito |
Ulceras cutáneas; piel obscurecida; alteraciones del comportamiento natatorio; ojos abombados; distensión abdominal |
Reducción de la densidad |
Microsporidiosis |
Tetramicra brevifilum |
Endoparásito |
– |
Reducción de la densidad |
Mixosporidiosis |
Enteromysum scophthalmi |
Endoparásito |
Numerosos quistes blancos sobre la piel y agallas |
Reducción de la densidad; desinfección completa de las instalaciones |
Flexibacteriosis |
Tenacibaculum maritimun |
Bacteria |
Al principio manchas grises en el área de la aleta dorsal; lesiones en la cabeza y boca; a veces podredumbre de las agallas |
Vacuna; antibióticos |
Furunculosis |
Aeromonas salmonicida |
Bacteria |
Lesiones como ebullición de la piel |
Antibióticos; vacunas hechas en la granja |
Streptococcosis |
Streptococcus parauberis |
Bacterium |
Hemorragia de las aletas, piel y superficies serosas; úlceras |
Vacuna |
Vibriosis |
Vibrio anguillarum |
Bacterium |
Piel obscurecida; letargo; aletas raídas; úlceras en la piel; exoftalmia |
Vacuna; antibióticos |
Proveedores con experiencia en patología
Consejo experto en patología se puede obtener de:
- Juan Luis Barja Pérez, Alicia Estévez Toranzo & Carlos Pereira Dopazo, Instituto de Acuicultura, Universidad de Santiago de Compostela
- Carlos Zarza, Servicio de Patología Skretting España
([email protected])
- Frances Padrós. Servicio de Diagnóstico Patológico en Peces. Universidad Autónoma de Barcelona
([email protected])