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VI. CULTIVO DE MICRCORUSTACUOS DE AGUA DULCE

1. CONSIDERACIONES GENERALES

Dentro de esta clase de organismos existen dos géneros de agua dulce de gran importancia en Acuacultura, que son Daphnia y Moina, las cuales se localizan en diversos medios. El género Daphnia comprende más de 20 especies, de las cuales las más conocidas son: Daphnia magna, D. pulex, D. longispina, D. strauss.

En relación al género Moina podemos mencionar a las especies: Moina rectirostris, M. macrocopa, M. brachiata y M. affinis.

1.1) Morfología

Estos organismos se caracterizan por poseer un cuerpo comprimido lateralmente y ovalado (Figura 24); no se distinguen segmentos como en otros crustáceos. Presentan dimorfismo sexual marcado, la hembra es más grande que el macho (Figura 25). Presentan un carapacho de quitina transparente, las antenas o apéndices con numerosas setas; ojos compaestos y simples (ojo nauplio). Una cavidad embriónica con huevos y embriones situados en la parte dorsal, entre el carapacho y el dorso del cuerpo. Para la identificación de especies son importantes los apéndices toráxicos en la forma y número de espinas y setas (Figura 24).

2. PARAMETROS AMBIENTALES

2.1) Hábitat

Son organismos ampliamente distribuidos en lagos, reservorios artificiales, charcos temporales y aguas de desecho. Poseen huevos de resistencia llamados efipios con una envoltura quitinosa que el aire y los animales pueden distribuir. Son abundantes en ambientes con alta concentración de materia orgánica en donde proliferan hacterias, levaduras y microalgas. Especies de Daphnia pueden cohabitar con Moina, Copépodos y Brachiópodos.

2.2) Temperatura

D. magna es especialmente resistente a cambios extremos de temperatura desde O°C a 22°C y se consideran 18°C-20°C como su temperatura óptima.

D. longispina, D. pulex y Moina rectirostris no sobreviven a cambios extremos de temperatura, se desarrollan en temperaturas de 28°C – 29°C.

Moina macrocopa se desarrolla también en un rango amplio de temperatura desde 5°C a 30°C y se considera de 24°C – 26°C como su temperatura óptima.

Moina brachiata crece en temperaturas de 8°C – 13°C.

2.3) Requerimientos de Oxígeno

Estos organismos habitan en medios donde la concentración de O2 es variable, ya que pueden crecer tanto en completa saturación de O2 hasta concentraciones muy bajas. Estas concentraciones están en relación a temperatura, concentración de materia orgánica, concentración de microalgas, etc.

La supervivencia en medios pobres de oxígeno depende de la capacidad de sintetizar hemoglobina. Este fenómeno está en relación directa del oxígeno ambiental. Un incremento en hemoglobina está en razón directa de alta temperatura y excesiva densidad de población. Incluso la hemoglobina está presente también en los huevos y la síntesis de hemoglobina también está relacionada con la concentración de CO2 ambiental.

FIG. 23

FIG. 23) Daphnia pulex (hembra) Vollmer, 1951

1.Antenula12.Cámara embrionaria
2.Antena13.Embrios
3.Músculos de las antenas14.Proceos abdominales
4.Ojos compuestos15.Postabdomen
5.Ganglio óptico16.Ano
6.Músculo del ojo17.Huevo toráxico
7.Cerebro18.Saco respiratorio
8.Procesos hepáticos19.Seta filtradora
9.Intestino20.Carapacho
10.Corazón21.Glándula maxilar
11.Ovario22.Primer par de apéndices
  23.Mandíbula
FIG. 24

FIG. 24) Estructura de antenulas en macho y hembra de D. magna (Irleva, 1973).

FIG. 25

FIG. 25) Huevo de resistencia efipios en D. pulex (a) y D. magna (b). (Irleva, 1973).

2.4) Requerimientos en pH

El pH óptimo en estas especies es difícil de determinar. En términos generales, el pH oscila entre 7.1 – 8 y por ejemplo en D. pulex el pH óptimo es de 5 a 6.

2.5) Otros Requerimientos

Existe en estas especies una alta sensibilidad a cambios del equilibrio iónico a diferentes concentraciones de cationes en el medio.

Las reacciones de Daphnia a la presencia de sales de fosfatos y nitratos (0.5 mg/l) es interesante, pues estimula la reproducción y la madurez sexual.

Los huevos contienen carotenoides y su síntesis requiere de la presencia de luz. Es importante mencionar que la madurez sexual también está influenciada por la presencia de luz.

La abundancia y distribución de estas especies depende de la variación estacional pues el número y tamaño de huevos de resistencia partenogenéticos y la medurez sexual dependen de las variaciones de T°, S, pH y luz, entre otros. Un exceso de luz solar reduce considerablemente una población.

En relación a la producción de huevos Ephippia (Figura 26) (huevos de resistencia partenogenéticos) dependen de la temperatura principalmente. Por ejemplo, en Moina rectirostris éstos se producen a 20~27°C en M. macrocopa a 14°C.

La alimentación en Daphnia y Moina es más compleja que en Branchiópodos, ya que estas especies se alimentan de bacterias, levaduras y microalgas. La Daphnia se adapta a cambios ambientales y puede adaptarse a ambientes nuevos en tres - siete días, reproduciéndose partenogenéticamente. Las colectas de estos organismos de los medios naturales para su cultivo, deben hacerse en Primavera y Verano.

3. TIPOS DE CULTIVO

La producción de Daphnia y Moina en condiciones de cultivo es relativamente sencilla por su resistencia a variaciones ambientales y diversas dietas altenativas que se pueden usar como se ha mencionado en párrafos anteriores.

Como en otras especies de alimento vivo, las alternativas de producción de estas especies pueden ser: cultivo en laboratorio para fines de investigeción, cultivo intensivo y cultivo extensivo. La Tabla 33 muestra la producción de microcrustáceos de agua dulce con diferentes especies de microalgas y bacterias.

3.1) Condiciones Optimas de Cultivo
T°C - 15°C a 25°C
O2 - 3 a 6 mg/l
pH - (6.8 – 7.8)
Grado de Oxidación - 14.8–26.2 mg O2/l

3.2) Medios de Cultivo Recomendables

Se recomienda cosechar estos organismos a intervalos regulares para mantener un equilibrio en el cultivo. En condiciones óptimas de cultivo para iniciar la cosecha (de 20 a 25 días después del inicio del cultivo), se puede obtener una biomasa de 10 g/m3. Las Tablas 34 y 35 muestran los diferentes medios de cultivo recomendables para sistemas intensivos y extensivos.

4. IMPORTANCIA NUTRICIONAL

Las especies más estudiadas en relación de su aporte nutricional para la acuacultura son Daphnia y Moina. La Tabla 36 nos muestra el contenido nutricional reportado para Daphnia.

Estas dos especies de cladóceros de agua dulce han sido seleccionadas dentro del grupo de zooplancton que ofrece alto contenido nutricional y facilidades de producción en cultivo.

La Tabla 37 muestra la composición mineral y proximal de cinco especies seleccionadas como alimento vivo; entre éstas se encuentran Daphniay Moina.

Es importante considerar que el contenido nutricional de estas especies está en función directa del sustrato en el que se desarrollan. La Tabla 5 muestra la composición de aminoácidos esenciales de estas cinco especies seleccionadas; dentro de éstas, Daphnia y Moina tienen un buen aporte.

Los cladóceros en Acuacultura han sido objeto de estudios muy serios en países desarrollados como el Japón y La Unión Soviética. Estos trabajos han permitido conocer las condiciones óptimas para su producción en cultivo masivo, así como las alternativas de producción en diferentes medios de cultivo.

TABLA 34. PRODUCCION DE MICROCRUSTACEOS DE AGUA DULCE CON
DIFERENTES ALIMENTOS (IRLEVA I.V., 1973)
ESPECIEALIMENTOCONCENTRACION DE ALIMENTO ccl/ml.T°CCONSUMO DE ALIMENIO cel/hrREFERENCIA
Daphnia magnabacterias coliformes1,00015200Manuflcva, 1964
2,000 700
3,000 1,050
4,000 1,700
D. magnaChlorella pyrenoidosa41018124Sushchenya, 1958
750 255
1,140a299
1,58024393
2,160 405
2,300 327
D. magnaSoenedesmus sp8 58Vasilleva, 1953
415 275
D. magnaAzotobacter y bacteria Coli22  Rodina, 1984a
470  
D. pulexChlamydomonas reinhardti25204.5Richman, 1958
50 5.8
75 13.8
100 19.1
Moina affinisSoenedesmus dimorphus6,00024.0 Shirota, 1966
 26.5 
Moina spSoenedesmus sp20021±216.6Torrentera, 1986 (observación personal)
500 48.0

TABLA 35. MEDIO DE CULTIVO PARA “PULGA DE AGUA” PARA
SISTEMA INTENSIVO (SEPESCA-ACUACULTURA, 1983, COM. PERS.)

-I-

  1. Póngase 6.6. gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.
  2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.
  3. Diluir el litro a 100 litros de agua.
  4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).
  5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.
  6. Colocar la solución en un sitio donde le de bastante sol.
  7. Sembrar el medio con “Pulgas de Agua”.

-II-

  1. Póngase 6.6 gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.
  2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.
  3. Diluir 1.5 litros en 100 litros de agua.
  4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).
  5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.
  6. Agregar 5 a 10 gr de hígado cocido en rebanadas de 1 mm de grueso. El hígado debe cocerse lo más rápidamente hasta que las proteínas se coagulen.
  7. No es necesario poner la solución al sol.
  8. Siémbrese el medio con “Pulgas de Agua”.
  9. Si falta oxígeno disuelto en la solución, debe retirarse un poco de agua (5 litros) y agregar la misma cantidad de agua limpia fresca y “aereada”.
  10. Se añadirá salvado fermentado e hígado cuando sea necesario.

-III-

  1. Mezclar hasta formar una suspensión uniforme 1/4 de paquete de levadura para pan fresca en 100 cc. de agua.
  2. Añádase la suspensión a 70 litros de agua.
  3. Debe mantenerse burbejeo de aire en la solución para evitar la falta de oxígeno disuelto.
  4. Siémbrese el medio con “Pulga de Agua”.
  5. Se agregará la suspensión cada cinco o seis días.
TABLA 36. RESULTADOS DE CULTIVOS DE MICROCRUSTACEOS DE AGUA DULCE (CLADOCEROS) CON NUTRIENTES
ORGANICOS E INORGANICOS - SISTEMAS INTENSIVO Y EXTENSIVO (IRLEVA, I.V., 1973)
FUENTE DE NUTRIENTESDOSIS DE FERTILIZACION POR m3 DE AGUANO. INICIAL DE ORGANISMOS g/m3TIEMPO DE MADU RACION DEL CULTIVO (DIAS)DURACION DEL CULTIVO (DIAS)BIOMASA MAX. OBTENIDA g/m3COSECHA DIARIA g/m3VOLLMEN TOTAL DEL CULTIVO M31H2OREFERENCIA
Excreta de caballo1.5 kg (inicial) 0.75 kg (cada 8–10 días)1020–25  40 Shipet, 1950
Excreta de caballo1.5 kg (inicial) 0.75 kg (cada 8–10 días)10  612.5  Asketou, 1954
Infusión de excreta de caballo10 litros5–5010–169–4525025.830.6Meshkowa, 1957
Infusión de pasto (2 kg/100 1)10 litros cada 4 días15–2015–1926–47250–1,50034.4 (30–38.5)5.5Meshkova, 1957
Infusión de excreta de caballo y pasto10 litros cada 2–4 días (10:3)10–27510–2414–42250–1,00027.327.5Meshkova, 1957
Levadura proteolizada16–20 g inicial30–4018–20120–130800–1,20030–5025–30Briskina, 1960
8–10 g/5 días       
Levadura proteolizada16–20 gr inicial10–4020–25180–270 16280Briskina, 1960
8–10 g/5 días    26525 
     23557 
Fertilizantes minerales37.5 g nitratos (13 mg N/l) 2 mg/l superfosfatos20–401215 13.4332Bogatova & Askerov, 1958
Fertilizantes minerales37.5 g nitrato de amonio y 20 gr de levadura (al inicio) 19 g de nitrato de amonio y 10 g de levadura c/5 días50720–25
(verano)
   Asketov, 1958
1005  25–4020–351960
1503–435–45
(invierno)
    
Excreta de caballo trozos de vegetales superfostatos y sulfato de amonio0.5 – 1 kg    28 Konovalov & Binting, 1956
Levadura proteolizada y fertilizantes minerales 10:20.5 kg 3–410–15 106 Askenov, 1960
     a  
     110  

TABLA 37. CONTENIDO DE AMINOACIDOS EN Daphnia (IRLEVA I.V., 1973)
Tyrosina4.27%
Tryptophano3.62%
Arginina10.92%
Histidina2.69%
Cistina1.17%
Methionina3.45%

TABLA 38. COMPOSICION MINERAL Y PROXIMAL DE CINCO ESPECIES
DE ALIMENIO VIVO SELECCIONADO
ESPECIE
Medio de cultivo
Brachionus PlicatilisTigriopus japonicusAcartia spDaphnia spLevadura
LevaduraLevadura + ChlorellaChlorellaLevadura + Chlorella
Mezcla%89.689.187.687.388.189.387.2
Proteína%7.27.97.89.08.57.58.8
Lipidos%2.32.33.82.81.31.42.9
Cenizas %0.40.40.50.52.10.7-
Ca mg/g0.120.260.210.150.390.210.12
Mg mg/g0.140.170.140.230.760.120.12
P mg/g1.481.441.371.311.481.461.85
Na mg/g0.410.300.290.616.630.741.09
K mg/g0.350.120.230.842.210.720.92
Fe mg/g15.952.543.433.811.572.246.4
Zn mg/g7.49.88.212.339.012.810.0
Mn mg/g0.41.11.11.00.213.20.5
Cu mg/g1.11.51.72.42.81.15.8

* Watanabe et al., 1983


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